DNA/RNA 濃度の計算ツール (A260)

核酸の濃度と収量、そして A260/A280・A260/A230 の純度比を求めます。A260 の吸光度・核酸の種類・希釈倍率を入れると、すぐに濃度が出ます。A280・A230・試料の量は任意で、入れると純度比と総収量が出ます。

入力しながら結果が更新されます。

使い方ガイド

  1. A260 の吸光度を入れます。
  2. 核酸の種類を選びます。種類ごとに換算係数が違います(dsDNA 50・ssDNA 33・RNA 40・ssOligo 33)。
  3. 測定のために希釈した場合は、希釈倍率を入れます。希釈していなければ 1 です。
  4. 試料の量を入れると、総量 (μg) も計算されます。任意です。
  5. A280 と A230 を入れると、純度比 A260/A280 と A260/A230 が並んで出ます。任意です。

💡 指数は e で入力できます。たとえば 1.5×10⁻⁵ は 1.5e-5 と入力します。

計算式と注意点

核酸は 260 nm 付近で最もよく光を吸収します。塩基の環構造のためです。吸光度は濃度に比例するので、既知の換算係数を掛ければ濃度が出ます。

濃度
濃度 (μg/mL) = A260 × 係数 × 希釈倍率
総量
総量 (μg) = 濃度 (μg/mL) × 体積 (mL)

換算係数は、A260 が1になるときの濃度です。

核酸の種類係数 (μg/mL)
dsDNA(二本鎖DNA)50
ssDNA(一本鎖DNA)33
RNA40
ssOligo(一本鎖オリゴヌクレオチド)33

係数が違うのは、スタッキングによって塩基の吸収の強さが変わるからです。二本鎖では塩基どうしが重なり合っているため、同じ量でも吸収が小さくなります。

μg/mL と ng/μL は数値として同じです。1 μg/mL = 1 ng/μL なので、単位を変えても数字は変わりません。記録に使っている単位のまま写せるように、両方を画面に出しています。

純度比

参考範囲低いときに考えること
A260/A280DNA は 1.8 前後、RNA は 2.0 前後タンパク質、フェノールの残留
A260/A2302.0〜2.2 前後塩(グアニジン・酢酸塩)、有機溶媒の残留

これらは参考の目安であって、合否の基準ではありません。下流の実験でうまくいくかどうかは、試料と用途によります。範囲を外れていても使えないとはかぎらず、範囲に入っていてもきれいだとはかぎりません。

注意点

  • A260 が 0.1〜1.0 の外にある値は信頼しにくくなります。分光光度計の直線範囲から外れるためです。高すぎるなら希釈して測り直し、低すぎるなら濃縮するか、より感度の高い方法をご検討ください。
  • ブランクは、試料が溶けているものと同じ溶液で取ってください。水なら水、TE なら同じ TE です。ブランクが合っていないと、とくに A230 が大きく狂います。
  • 吸光度が測っているのは、無傷の核酸だけではありません。遊離のヌクレオチド・一本鎖の断片・残ったプライマーも 260 nm で吸収します。正確な定量が必要な場面では、蛍光色素を使う方法のほうが向いています。
  • 吸光度では、混ざった試料の DNA と RNA を見分けられません。種類を選ぶのは計算に使う係数を選ぶことであって、試料に何が入っているかを確かめることではありません。
  • 濁った試料は光を散乱し、高く出ます。A320 が0に近いことを確かめるのが通常の用心です。

よくある質問

あわせてよく使うツール