細胞数計測の計算ツール

血球計算盤の計数値から、cells/mL・総細胞数・生存率を求めます。ブロックごとの計数値を貼り付けると、入力しながら計算します。カンマ・空白・改行のいずれでも区切れます。

1ブロック (1 mm × 1 mm) につき1つの値を入れます。カンマ・空白・改行のいずれも区切りとして扱います。

トリパンブルーと 1:1 で混ぜた場合は 2、希釈していない場合は 1 です。

これらは任意です。入れなければその結果だけが出ず、ほかはすべて計算されます。

使い方ガイド

  1. ブロックごとに数えた細胞数を入れます。カンマ・空白・改行で区切るか、表計算ソフトからそのまま貼り付けてください。
  2. 希釈倍率を入れます。既定は 1 です。トリパンブルーと 1:1 で混ぜた場合は 2 と入れてください。
  3. cells/mL が大きく表示され、その横に平均個数と数えたブロック数が出ます。
  4. 死細胞数を足すと、生存率が計算されます。(任意)
  5. 懸濁液の総量を足すと、総細胞数が計算されます。(任意)
  6. 必要な細胞数を足すと、取るべき量が出ます。(任意)

💡 指数は e で入力できます。たとえば 1.5×10⁻⁵ は 1.5e-5 と入力します。

細胞数計測の計算式と注意点

血球計算盤は、容積が正確に分かっているごく小さな部屋です。その中の細胞を数えれば、濃度が分かります。

標準的な血球計算盤の1ブロックは 1 mm 四方で、その上 0.1 mm のところにカバーガラスが載ります。

1ブロックの上の容積
1 mm × 1 mm × 0.1 mm = 0.1 mm³ = 0.1 μL = 10⁻⁴ mL

つまり1ブロックで数えた細胞は 10⁻⁴ mL の中の細胞であり、これを1 mL あたりの濃度にするには 10⁴ を掛けます。

濃度
cells/mL = 1ブロックあたりの平均個数 × 希釈倍率 × 10⁴

10⁴ は計算盤の寸法から出てくる数です。任意に決めた定数ではありません。

あとはそこから続きます。

総細胞数
総細胞数 = cells/mL × 液量(mL)
生存率
生存率(%) = 生細胞 ÷ (生細胞 + 死細胞) × 100
取る量
液量 = 必要な細胞数 ÷ cells/mL

注意点

  • 希釈倍率の既定は 1 です。トリパンブルーと 1:1 で混ぜたなら、必ず 2 に変えてください。そのままにすると、計数値が本当の値の半分になります。誤った細胞数は見た目には誤って見えないため、この間違いはずっとあとになって表に出がちです。
  • 1ブロックあたり 20〜250 個を数えるのが通常の運用です。少なすぎると偶然に左右され、多すぎると重なって見落とされます。この範囲を外れたら、試料を希釈するか濃縮して数え直してください。
  • 線の上に乗った細胞をどう扱うか、規則を決めて守ってください。よく使われるのは、上と左の線に触れた細胞は数え、下と右は数えないという規則です。人によって規則が違うと結果が食い違います。
  • 入れる前によく混ぜてください。細胞は沈みます。ピペットで静かに数回混ぜ、すぐに入れてください。
  • トリパンブルーは、時間が経てば生細胞も染めます。混ぜてから3〜5分以内に数えてください。長く置くと、生存率が実際より低く出ます。
  • 細胞が塊になっていると数えにくくなります。数える前に単一細胞まで分散させ、塊を1個と数えるのかその細胞数で数えるのかを、あらかじめ決めておいてください。
  • 複数のブロックを数えるのは、平均を取るためです。四隅の4ブロックを選ぶのが通常です。ブロック間のばらつきが大きい場合は、混ぜ方か分散が足りていません。

よくある質問

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