사용 방법
- 수령한 올리고 목록을 붙여넣습니다. 엑셀에서 「이름」과 「양」 두 열을 함께 복사하면 그대로 인식됩니다.
- 수령량의 단위를 선택합니다. nmol이면 튜브 라벨에 적힌 값을 그대로 사용하고, μg이면 세 번째 칸에 분자량을 함께 입력해야 합니다.
- 목표 스톡 농도를 확인합니다. 기본값 100 μM은 출처가 표준으로 권하는 값입니다.
- 표에 튜브별 투입 버퍼 부피가 산출됩니다. 표를 그대로 복사하거나 엑셀로 내려받아 벤치에서 활용하세요.
- 아래에서 working 용액도 함께 계산할 수 있습니다. 반응에 투입하는 것은 스톡이 아니라 이쪽입니다.
공식 설명 및 주의사항
μM은 「리터당 마이크로몰」이며, 이를 작은 단위로 환산하면 그대로 「μL당 피코몰」이 됩니다. 따라서 재현탁 계산에는 별도로 외울 상수가 없습니다. 100 μM 스톡이라면 1 μL 안에 100 pmol이 들어 있다는 뜻입니다.
계산식
수령량이 nmol이면 한 줄, μg이면 분자량으로 nmol을 먼저 구합니다.
- 넣을 버퍼 (μL)
- 받은 양(nmol) × 1000 ÷ 목표 농도(μM)
- μg에서 nmol로
- 받은 양(μg) × 1000 ÷ 분자량(g/mol)
- working 용액
- 필요한 스톡(μL) = working 농도 × 만들 부피 ÷ 스톡 농도
주의사항
- 출처의 예시와 동일합니다. 9 nmol을 100 μM으로 조제하려면 90 μL를 첨가합니다. 즉 nmol에 10을 곱한 값이 μL입니다.
- 튜브를 개봉하기 전에 잠시 원심분리하세요. 건조된 올리고는 얇은 막이나 흰 분말로 남는데, 배송 중 튜브 바닥에서 떨어져 개봉 시 유실될 수 있습니다.
- 잘 용해되지 않으면 55 ℃에서 1–5분 가온한 뒤 충분히 볼텍싱하라고 출처가 권장합니다. 형광물질이나 소수성 변형이 결합된 올리고는 더 오래 걸립니다.
- ⚠️ 이 계산은 프라이머 Tm 도구에도 별도로 구현되어 있습니다. 두 곳이 각각 계산하므로 한쪽 식을 수정해도 다른 쪽은 반영되지 않습니다. 값이 다르게 보이면 이 점을 먼저 확인하세요.
- OD260(A260)은 입력으로 받지 않습니다. OD를 몰수로 환산하려면 해당 올리고의 ε260이 필요한데, 그 값이 기재된 사양서에는 nmol도 이미 인쇄되어 있어 OD를 거치는 편이 오히려 번거롭습니다. ε260 표를 실을 만한 1차 출처도 확보하지 못했습니다.
자주 묻는 질문
출처가 표준으로 권장하는 농도이기 때문입니다. 조제가 간편하고 이후 희석에도 두루 사용됩니다. 다만 어디까지나 권장값이므로 변경 가능하며, 칸에 다른 값을 입력하면 표가 그에 맞춰 재계산됩니다.
출처는 pH가 일정하게 유지되는 TE 버퍼를 우선 권장하고, 뉴클레아제가 없는 멸균수도 대안으로 제시합니다. 다만 DEPC 처리수나 탈이온 장치에서 바로 받은 물은 산성인 경우가 많아 시간이 지나면 DNA를 손상시킬 수 있으므로 피하라고 안내합니다.
제한을 두지 않았습니다. 96웰 한 판을 통째로 붙여넣어도 됩니다. 이 도구를 별도로 만든 이유가 바로 그것입니다. 계산 자체는 나눗셈 한 번이지만, 수령하는 것은 언제나 한 개가 아니라 한 판이기 때문입니다.
머리글 행을 함께 복사한 경우가 대부분입니다. 해당 행은 계산에서 제외되고 몇 번째 행이었는지만 안내하므로, 그대로 두셔도 결과에는 영향이 없습니다.
가능합니다. 한 행에 값이 하나면 그 값을 「수령량」으로 인식합니다. 다만 이름을 함께 입력하시길 권장합니다. 동일하게 생긴 튜브 12개가 꽂힌 랙 앞에서 「3번 행에 91 μL」는 활용할 수 없는 안내이기 때문입니다.