라이게이션 계산기

라이게이션 반응에 넣을 양을 몰비에 맞춰 계산합니다.벡터와 인서트의 길이·농도를 입력하세요.

한 행에 하나씩, 「이름 ⇥ 길이(bp) ⇥ 농도(ng/µL) ⇥ 몰비(선택)」 순서입니다. 몰비를 입력하지 않으면 위에서 선택한 방식의 기본값을 적용합니다.

사용 방법

  1. 벡터의 길이와 농도, 반응에 투입할 양(ng)을 입력합니다.
  2. 조립 방식을 선택합니다. 인서트가 하나면 3 : 1, 여러 조각을 한 번에 연결하면 등몰이 기본값입니다.
  3. 인서트를 한 행에 하나씩 붙여넣습니다. 행마다 몰비를 개별 지정하려면 네 번째 칸에 입력하세요.
  4. 반응 부피·버퍼 배수·리가아제 부피를 확인합니다. 기본값은 20 µL · 10× · 1 µL입니다.
  5. 표에 표시된 순서대로 피펫팅합니다. 물이 가장 많으므로 먼저 넣고 리가아제를 마지막에 첨가합니다.

공식과 주의사항

몰비를 맞추는 것은 나눗셈 한 번이며, 나머지는 튜브를 채우는 작업입니다.

몰수로 바꾸기

염기쌍 하나의 평균 질량이 정해져 있으므로 길이와 질량만 알면 몰수가 산출됩니다. 이 사이트의 ng ↔ pmol 변환기와 동일한 평균값을 사용합니다.

pmol
ng × 1000 / (bp × 650)
1 pmol 의 질량
bp × 650 / 1000 ng

인서트 양

인서트의 몰수를 벡터 몰수에 몰비를 곱해 결정하고, 그것을 다시 질량과 부피로 환산합니다.

인서트 pmol
벡터 pmol × 몰비
인서트 ng
인서트 pmol × 길이 × 650 / 1000
인서트 µL
인서트 ng ÷ 농도

튜브 채우기

버퍼 부피는 표에서 찾는 것이 아니라 배수에서 산출됩니다. 10× 버퍼는 10분의 1을 넣으면 1×가 됩니다.

버퍼 µL
반응 부피 ÷ 버퍼 배수
물 µL
반응 부피 − DNA − 버퍼 − 리가아제

주의사항

  • 물이 음수가 되면 계산하지 않고 초과량을 안내합니다. DNA 농도가 낮을 때 발생하며, 투입할 벡터 양(ng)을 줄이는 것이 가장 간단한 해결책입니다.
  • 3 : 1은 「인서트가 벡터보다 작은」 표준 클로닝의 출발점입니다(Addgene). 인서트가 크거나 평활말단이면 비율을 바꿔 가며 여러 반응을 수행하는 것이 일반적입니다.
  • 여러 조각을 한 번에 연결할 때는 등몰이 기본입니다. Addgene은 5조각을 초과하면 성공률이 급격히 낮아지는 것을 경험한 실험실들이 있다고 기술하고 있습니다.
  • 염기쌍당 650 g/mol은 평균값입니다. 조각이 짧을수록 실제 조성에서 벗어나며, 이 오차는 몰비에 그대로 반영됩니다.
  • 리가아제는 마지막에 첨가하고 볼텍싱하지 않습니다. 글리세롤이 포함되어 층이 분리되므로 피펫으로 부드럽게 혼합합니다.
  • 이 계산은 「무엇을 얼마나 넣을지」까지입니다. 온도·시간·평활말단 여부는 사용하시는 효소의 설명서를 따르세요.

자주 묻는 질문

참고문헌

반응 조성과 기본값의 출처입니다. ng ↔ pmol 산술은 정의이고 염기쌍당 평균 분자량은 ng ↔ pmol 변환기의 값을 그대로 가져옵니다.

  1. Addgene. Protocol — DNA Ligation (How to Ligate Plasmid DNA). Read 2026-08-21.https://www.addgene.org/protocols/dna-ligation/10 µL 반응의 조성(10× 버퍼 1 µL 또는 5× 버퍼 2 µL · T4 리가아제 0.5–1 µL · 물로 10 µL), 표준 클로닝의 인서트 : 벡터 = 3 : 1, 총 DNA 100 ng 부근
  2. Addgene. Protocol — Gibson Assembly. Read 2026-08-21.https://www.addgene.org/protocols/gibson-assembly/여러 조각을 붙일 때의 등몰 기본값(「조각들이 등몰일 때 수율이 가장 좋다」)과, 다섯 조각을 넘으면 성공률이 급격히 떨어진다는 관찰의 경고

NEB의 프로토콜 페이지는 이 값을 옮길 당시 접속되지 않아(봇 확인 화면) 사용하지 않았습니다. Golden Gate 전용 문서는 확보하지 못해 등몰 기본값의 근거는 Gibson 문서 하나입니다.

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